Блог Paradise Seeds: Выращивание каннабиса в почвенных и беспочвенных средах

Спонсор поста – производитель удобрений Simplex.

Еще почитать:

Карточки: Самый простой способ выращивания Первый индорный гров на земле. С чего начать? Карточки: Как прорастить и посадить семечку

Но любопытство и тяга к лучшему неудержимы! Поэтому усиливаем бдительность, проверяем исправность угольного фильтра и берёмся за дело. А исследовать мы будем добавки для усиления и раскрытия максимально возможного потенциала аромата у шишек.

В предыдущей статье мы рассматривали факторы, влияющие на аромат соцветий. Сейчас же мы углубимся в изучение удобрений для усиления аромата.

Интересно, что добавляет производитель в замес, за счёт чего удобрение влияет на аромат? Порыскав по ассортименту специальных удобрений и наконец-то откопав состав, я обнаружила, что помимо знакомой троицы NPK (азот, фосфор и калий), а также микроэлементов (железо, марганец, цинк, медь, бор, молибден, йод и кобальт), в составе присутствуют витамины (B1, B2, B3, B12), растительные сахара и аминокислоты.

И вот тут-то и стало интересно. Про макро- и микроэлементы написано много и подробно, про роль глюкозы у нас недавно выходила статья. А вот про аминокислоты и их роль в жизни растения информацию мы ещё не изучали. Поэтому ныряем в эту тему.

Аминокислоты

В природе найдено и описано около 300 аминокислот. В состав белков входят только 20 из них — такие аминокислоты называются протеиногенными. Они являются основными частями животных и растительных белков, а их встраивание в молекулу регулируется информацией генетического кода.

Изучение структуры белков и их превращений имеет большое биологическое значение, так как процесс превращения белковых веществ составляет сущность всех жизненных процессов. По мере изучения физиологической роли аминокислот было установлено, что в организме как растения, так и человека они используются для синтеза гормонов, витаминов и других необходимых для жизни веществ. Аминокислоты подвергаются ряду превращений: дезаминируются, выделяют энергию, переходят в более простые соединения, а также переминируются и служат источником для образования других аминокислот.

Аминокислоты, входящие в состав белков, относятся к α-аминокислотам, хотя в свободном состоянии в растениях встречаются и β- (бета) и γ- (гамма) изомеры. В состав удобрений входят, как правило, α-аминокислоты.

В природе встречаются два оптических изомера аминокислот: L- и D-ряда. Все аминокислоты, входящие в состав растительных и животных белков, относятся к L-изомерам. Синтетические аминокислоты являются смесью L- и D-изомеров. И это очень важное условие.

Дело в том, что L-формы хорошо усваиваются растениями и легко включаются в разные процессы обмена веществ, тогда как D-формы растениями не усваиваются, а иногда даже угнетают процессы обмена. Это объяснимо тем, что ферментативные системы организмов специфично приспособлены только к L-аминокислотам. D-формы аминокислот не усваиваются организмом человека и животных, но зато часто входят в состав патогенных белков (бациллы сибирской язвы, картофельной палочки и других).

С катионами двухвалентных металлов некоторые аминокислоты (глицин, глутаминовая кислота и аспарагиновая кислота) способны образовывать как обычные, так и внутрикомплексные соли (комплексонаты). Эту их способность используют производители микроудобрений.

Очень часто можно услышать, что в состав микроудобрений входят незаменимые аминокислоты. Но для кого они незаменимы? Незаменимыми они являются только для человека и животных (и то не для всех), у которых они обязательно должны входить в рацион питания. Что касается растений, то для них такого понятия не существует — растение само в состоянии синтезировать все необходимые для него органические вещества. Поэтому заявление о наличии в составе удобрений незаменимых аминокислот некорректно.

Аминокислоты необходимы для полноценного осуществления метаболизма растений, так как они являются строительным материалом для белков. Наряду с запасными белками, которые определяют качество урожая, важную роль играют белки-ферменты, вовлечённые в регулирование всех процессов, происходящих в растительной клетке.

Как уже было сказано, растения способны синтезировать все необходимые для них аминокислоты. Однако в период интенсивного роста или при негативном влиянии стрессовых факторов поступление аминокислот извне позволяет растению ускорить метаболические процессы, не тратя при этом дополнительную энергию на собственный синтез.

Также было замечено, что в стрессовой ситуации растения способны накапливать значительные количества свободных (не связанных в пептиды и белки) аминокислот, которые позже позволяют сократить расход энергии на синтез белков. Если при таких ситуациях аминокислоты поступают извне, растения будут в лучших условиях, что неизменно отразится на их росте и развитии.

Значение аминокислот

Перечислим роли некоторых аминокислот в жизнедеятельности растения.

Пролин и гидроксипролин способствуют созданию прочной клеточной стенки, повышают устойчивость растений к стрессовым факторам, снижают риск поражения.

Глицин и глутаминовая кислота способствуют повышению концентрации хлорофилла, улучшая условия прохождения процесса фотосинтеза.

С опылением и образованием завязей чаще всего ассоциируются такие аминокислоты, как пролин, лизин, метионин и глутаминовая кислота.

Пролин, глутаминовая кислота и глицин также положительно влияют на опыление и формирование плодов, способствуют прорастанию пыльцы и оплодотворению завязи. Пролин повышает фертильность пыльцы. Аланин, валин и лейцин способствуют улучшению качества плодов, гистидин способствует дозреванию плодов

Глутаминовая кислота влияет на осмотические процессы в протоплазме, влияя на открывание и закрывание устьиц.

Ряд аминокислот являются предшественниками или активаторами фитогормонов и ростовых веществ в растениях. Так, метионин является предшественником этилена. Триптофан помогает преодолеть стрессы, предотвращая задержку в росте.

Агринин повышает синтез гормонов, связанных с формированием цветков и плодов, способствует проникновению в корни питательных веществ.

Глутаминовая и аспарагиновая кислоты являются предшественниками для всех других аминокислот, принимают участие в азотном обмене и синтезе белка.

С более широким списком аминокислот и их ролей можно ознакомиться здесь 

Выбор и применение препаратов с аминокислотами

Внесение аминокислот возможно путём опрыскивания по листу или через корневую систему при поливе. При внесении на листок аминокислоты проникают в листовую пластинку через устьица и, попав внутрь клетки, транспортируются в другие органы и части растения.

Добавление аминокислот в препараты с пестицидами увеличивает проникновение таких пестицидов в ткани, позволяя снижать их дозировки.

Аминокислоты могут быть произведены разными способами:

Аминокислоты, полученные путём синтеза (синтетические АК) — как уже было отмечено, смесь L- и D-изомеров. Как правило, не применяются в растениеводстве и животноводстве, поскольку D-изомеры мало или совсем не усваиваются организмами и могут быть токсичными. Гидролиз белка, который может быть ферментативным (бактериальная и небактериальная ферментация) и неферментативным. Ферментативный гидролиз — дорогостоящий процесс, который происходит с применением специальных бактерий и приводит к получению полноценных свободных аминокислот — только эти биологически активные аминокислоты усваивают растения. Неферментативный гидролиз (или химический) — процесс менее дорогостоящий, но он разрушительно воздействует на аминокислоты, многие из которых повреждаются и становятся недоступными для усвоения растением. Аминокислотные комплексы, полученные из растительного сырья, содержат 18 типов протеиногеных аминокислот. У полученных из животного сырья на 1 тип меньше — отсутствует Триптофан. Также при извлечении аминокислот из животного сырья процент свободных аминокислот обычно значительно ниже общего количества аминокислот. При гидролизе животного белка в составе аминограммы преобладает основная аминокислота глицин, которая необходима растениям лишь в ограниченном количестве — её избыток токсичен для растения.

Сырьём для производства аминокислот могут служить:

Растительные отходы (соевый шрот, меласса сахарного тростника, рисовая барда и др.) Отходы переработки животного сырья (кровь, шерсть, рога и копыта, остатки рыбы) Отходы животноводства и компостов Водоросли Белок культивируемых микроорганизмов Экстракты растительного сырья

Глюкоза

У зелёных растений сахар играет важную роль в хранении, транспортировке и использовании энергии, получаемой в результате фотосинтеза. Форма сахара, которую синтезируют растения, называется глюкозой.

Растения вырабатывают глюкозу через хлорофилл в своих листьях. Они используют молекулы воды, CO2 и энергию солнечного света, производя глюкозу (плюс кислород в качестве побочного продукта).

После накопления глюкозы растение может её преобразовать обратно в энергию или использовать для производства всего остального, в чем нуждается:

Целлюлозы — она нужна для создания клеточных стенок и придания прочности и структуры растительным тканям

Крахмала — для длительного хранения энергии

Липидов, жиров и масел, необходимых для семян

Аминокислот

Растение транспортирует часть глюкозы, которую оно произвело и накопило, в корневую часть, а затем выделяет её в почву через корни, где становится питательным источником для полезных бактерий, микоризы и других маленьких «помощников», живущих в ризосфере. «Помощники», питаясь глюкозой, размножаются и работают над расщеплением сложных органических питательных веществ и делают их доступными для растения.

В виде дополнительного источника глюкозы применяют мёд, панелу (тростниковый сахар), сироп топинамбура и мелассу. Подробнее об использовании последней в выращивании каннабиса вы можете прочитать здесь.

Итог

В почвенный субстрат перед посадкой растения добавляем микоризу. Во время вегетации и цветения каннабиса даём «стройматериалы» в виде любого источника глюкозы и удобрения с 18-ю аминокислотами растительного происхождения с ферментативным гидролизом. На стадии цветения создаём умеренно стрессовую обстановку: интенсивность света, наличие УФ-излучения, сухой воздух — чтобы куст интенсивнее поглощал питание из субстрата. Вуаля, бутоны не только будут издавать более интенсивный и манящий аромат, но и прибавят в весе и объёме.

Пишите в комментариях, кто испытывал на своих растениях удобрения с аминокислотами.

Автор: @PollyMolly, Dzagi Источники: Infoindustria (первый, второй), 42 FastBuds

Еще почитать:

 

Каннабиноиды и терпены: способы увеличения вторичных метаболитов каннабиса Фосфор и его влияние на урожайность Как улучшить запах соцветий

Что такое сфагнум?

Сфагнум – род болотных мхов. Не имея корней, он растет исключительно вверх, в то время как его нижняя часть постепенно отмирает, превращаясь в торф. Найти мох сфагнум можно на болотистых лесных участках, где он образует обширные мягкие ковры светло-зеленого цвета.

Для гроверов сфагнум примечателен тем, что его можно использовать в качестве компонента почвосмесей.

Достоинства сфагнума

Высокая влагоёмкость. Сфагнум способен удерживать в 20 раз больше воды по сравнению с собственным весом, а затем постепенно отдавать влагу растениям. Наличие в составе мощного натурального антисептика – сфагнола. Это вещество подавляет большинство бактерий и плесеней, препятствует гниению. Рыхлая структура. Благодаря ей добавление сфагнума в почвосмесь улучшает аэрацию корневой зоны растения. Содержит серу. Этот микроэлемент особенно необходим каннабису в период цветения. Растёт почти повсеместно на территории РФ.

Недостатки сфагнума

Необходимость подготовки. Свежесобранный сфагнум не подходит для выращивания. Требуется специальная подготовка для добавления его в почвосмесь. Нельзя использовать в качестве основного компонента почвосмеси. Если в качестве субстрата использовать только мох, после полива он не будет держать форму и может спрессоваться под собственным весом, из-за чего корни будут задыхаться. Низкий показатель pH. У сфагнума он варьирует от 3,0 до 5,0 . Такие показатели не подходят для выращивания каннабиса в чистом сфагнуме, поэтому его можно использовать только в качестве добавки к почвосмеси в количестве 10-25%.

Как правильно собирать сфагнум?

Сфагнум заготавливают в августе-сентябре. Желательно искать его подальше от дорог и построек. Дело в том, что мхи впитывают в себя не только полезные, но и вредные вещества, которые могут навредить вам и вашим растениям.

Для того чтобы не вредить природе, собирайте мох полосами шириной 20-30 сантиметров, оставляя между полосами нетронутые промежутки такой же ширины. Чтобы уменьшить вес мха при транспортировке, сначала отожмите мох от излишков влаги и только затем сложите в мешок.

Как подготовить мох для почвосмеси?

Собранный сфагнум нужно перебрать, удаляя постороннюю растительность и насекомых, после чего на 10 минут замочить в кипятке, чтобы убить мелких насекомых. Ещё эффективнее провести дезинсекцию, замочив мох в растворе инсектицида. Затем мох раскладываем в хорошо проветриваемом месте в полутени и сушим, периодически переворачивая. Высушенный сфагнум можно хранить в овощном отделе холодильника или в прохладном подвале, упаковав его в полиэтиленовый пакет. Перед применением сухой мох обязательно нужно замочить в тёплой воде и отжать. Если этого не сделать и сразу добавить мох в почвосмесь, он может плохо впитывать воду при поливе. После замачивания измельчаем сфагнум на куски размером 0,5-3 см, после этого его можно добавлять в почвосмесь.

Какие инсектициды можно использовать для обработки сфагнума?

Для обработки сфагнума подходят нетоксичные для растений препараты, например, Оберон-Рапид (3 мл. на 10 литров воды).

При работе с инсектицидами обязательно соблюдайте меры предосторожности: надевайте перчатки и защитные очки.

Как использовать сфагнум в почвосмесях?

 В почвосмесь сфагнум добавляют со следующими целями: 

Профилактика плесени и корневой бактериальной гнили Улучшение аэрации и повышение влагоёмкости почвы Нейтрализация щелочного грунта Можно использовать как дома, так и в аутдоре. В индоре уделите особое внимание обработке мха от насекомых. Добавляйте мох в количестве не более 25% от общего объёма почвосмеси. Проверяйте Ph готовой почвосмеси. Если Ph готовой почвы менее 6,5 – можно либо уменьшить количество сфагнума в смеси, либо скорректировать Ph с помощью специальных добавок: доломитовой муки, гашеной извести или золы. Сколько их добавлять, уже будет зависеть от конкретной ситуации – вам придётся поэкспериментировать. В аутдоре лучше  всего применять сфагнум на щелочных и тяжёлых глинистых почвах. Делать это нужно весной, добавляя мох в почву при перекопке. В этом случае сфагнум скорректирует Ph и улучшит аэрирование почвы. Для лучшего аэрирования почвы, кроме сфагнума, добавляйте в неё перлит (до 30%).

Пожалуйста, оставляйте свои комментарии, делитесь опытом по использованию сфагнума. Больших и крепких вам урожаев!

Автор: @DrKostas

Еще почитать:

Как приготовить органическую супер почву и как выращивать на ней Растения-компаньоны для каннабиса Первый индорный гров на земле. С чего начать?

 

Ключевые выводы:

Для получения наилучшего урожая дозировка азота на стадии цветения должна составлять 194 мг/л, фосфора — 59 мг/л. Калий в дозировке от 60 до 340 мг/л никак не влияет на урожайность. Разница в дозировке удобрений не влияет на концентрацию каннабиноидов.

Предупреждение: Указанные дозировки оптимальны ТОЛЬКО в отношении сорта Gelato, выращиваемого на системах глубоководной культуры.

Вступление

Исторически сложилось так, что во многих странах выращивание психоактивных растений, таких как каннабис, запрещено. Запрет стал серьезным препятствием для исследований этой культуры. Тем не менее, изменение общественного отношения к потреблению каннабиса привело к отмене запрета каннабиса в нескольких странах. После легализации в 2018 году в Канаде производство каннабиса быстро стало важной частью агропромышленной отрасли, доход от которой оценивается в миллиарды долларов.

 

Однако у культиваторов каннабиса до сих пор отсутствует проверенная научная информация об оптимальных условиях выращивания. Правильное снабжение минеральными питательными веществами необходимо для эффективного и устойчивого выращивания любых растений. Среди важнейших минеральных элементов питания для растений — азот (N), фосфор (P) и калий (K). 

 

Пока существует относительно мало исследований, которые бы изучали реакцию каннабиса на эти питательные вещества. В результате производители каннабиса в настоящее время полагаются на непроверенные рецепты удобрений, которые определены производителем либо соглашением сообщества, основанном на ранее нелегальном выращивании.

 

Это создает проблему, поскольку недостаток или избыток питательных веществ может не просто снижать урожайность, но и приводить к загрязнению окружающей среды из-за стока избыточных питательных веществ.

 

В Онтарио удаление отработанных питательных растворов теплиц, в том числе и с предприятий по производству каннабиса, регулируется законодательством и требует значительных затрат для земледельцев. Понимание потребностей каннабиса в минеральных питательных веществах может помочь максимизировать производство при одновременном сокращении отходов питательных веществ и связанном с этим воздействием на окружающую среду.

 

В недавних рецензируемых исследованиях начала подниматься тема реакции каннабиса на минеральные питательные вещества. Эти исследования показывают, что оптимальное снабжение азотом как для вегетативных, так и для цветущих стадий выращивания каннабиса с использованием обычных удобрений составляет примерно 160 мг/л. У растений, получавших азот ниже 160 мг/л во время вегетативной стадии, наблюдалось снижение фотосинтетической способности и роста растений, а на стадии цветения снижалась урожайность соцветий, хотя концентрации каннабиноидов (а не общая продукция) были выше при чрезвычайно низких нормах азота.

 

Оптимальное снабжение азотом растений, выращиваемых с использованием жидких органических удобрений, кажется выше. При этом самые высокие урожаи достигаются при содержании органического азота приблизительно 390 и 260 мг/л для вегетативной стадии и стадии цветения соответственно. Учитывая ограниченное количество исследований и относительную важность азота для роста и развития растений, для выработки более точных рекомендаций необходимо собрать больше информации о реакции каннабиса на азот.

 

Фосфорное питание уже давно находится в центре внимания при выращивании каннабиса. Производители часто снабжают растения относительно высокими концентрациями P (до 200 мг/л) на стадии цветения, основываясь на убеждении, что это способствует развитию цветов. Однако существует мало доказательств в поддержку этой практики. Недавнее исследование показало, что растения каннабиса в вегетативной стадии, снабжаемые фосфором в концентрации 100 мг/л, вели себя аналогично тем, которые получали 30 мг/л. Высокая концентрация фосфора в питательном растворе создает ситуацию, при которой загрязнение окружающей среды от избытка фосфора более вероятно. Очевидно, что необходимо оценить практику обеспечения каннабиса очень высокими концентрациями фосфора.

 

Хотя нет опубликованных исследований, изучающих влияние калия на качество соцветий, в некоторых недавних исследованиях рассматривалось, как калий влияет на урожайность соцветий. Урожайность выращенной в аквапонике конопли (г/растение) линейно возрастала с увеличением концентрации калия в питательном растворе в диапазоне 15-150 мг/л. На вегетативной стадии растения каннабиса, получавшие калий в концентрации 15 мг/л, имели замедленный рост и проявляли симптомы некорневой болезни, характерные для дефицита калия, в то время как растения, получавшие 60-240 м/л калия, производили значительно больше биомассы и не проявляли симптомов дефицита. Несмотря на отсутствие рекомендаций, основанных на научных исследованиях, некоторые компании по производству удобрений рекомендуют добавлять калий в высоких концентрациях 300-400 мг/л. Необходимы дополнительные исследования для определения оптимальной концентрации калия в питательном растворе во время цветения каннабиса в системах беспочвенного производства.

 

Проблема при разработке рекомендаций по удобрениям заключается в том, что количество комбинаций концентраций питательных веществ, которые могут быть эмпирически проверены, ограничено из-за логистических и статистических соображений. В результате большинство исследований питательных веществ имеют ограниченный диапазон составов питательных веществ, которые могут упускать из виду потенциальные взаимодействия питательных веществ в широком диапазоне составов питательных веществ.

 

Материалы и методы

Эксперимент проводился в помещении для выращивания в контролируемой среде на предприятии по производству каннабиса, одобренном Министерством здравоохранения Канады, расположенном в Южном Онтарио. Для этого испытания использовалась клональная селекция с высоким содержанием дельта-9-тетрагидроканнабинола (ТГК) и низким содержанием каннабидиола (КБД) сорта «Gelato». Растения выращивали в системах глубоководной культуры (DWC). В каждом блоке DWC в качестве резервуара для питательного раствора использовалось белое пластиковое ведро объемом 19 л. Блоки DWC были размещены на полу в пять двойных рядов по десять DWC в каждом (т.е. всего 100 DWC).

 

Однородные двухнедельные черенки, укоренившиеся в кубиках каменной ваты, пересаживали в каждый блок DWC с помощью сетчатого горшка, заполненного керамзитовой галькой 8-16 мм, и вставляли в верхнюю часть крышки ведра. При этом нижние три сантиметра сетчатого горшка погружали в питательный раствор. Каждое ведро DWC снабжалось питательным раствором и имело воздушный камень, обеспечивающий 1,5 литра воздуха в минуту для непрерывного перемешивания и аэрации раствора. Питательные растворы во всех контейнерах DWC сливались и заменялись свежим питательным раствором еженедельно.

 

Растения выращивали в системах DWC вегетативно, в условиях режима 18/6 в течение трех недель, прежде чем перейти на 12/12-часовой режим (т.е. короткий день) и вызвать цветение. Растения выращивались в условиях короткого дня в течение семи недель перед сбором урожая. Свет обеспечивался МГЛ-лампами мощностью 1000 Вт при средней плотности потока фотосинтетических фотонов на уровне купола 570 мкмоль. Температура воздуха и относительная влажность были установлены на уровне 25 °C и 65% соответственно. Не было никаких добавок CO2.

 

В течение вегетативного роста все растения получали идентичный питательный раствор. После перехода в стадию цветения растения получали разные питательные растворы в течение оставшейся части эксперимента.

 

Для определения влияния различных концентраций NPK на растения каннабиса исследователи измеряли надземный рост, корневую массу, урожайность соцветий и содержание каннабиноидов.

 

Результаты

Урожайность соцветий

Урожайность соцветий каннабиса реагировала на увеличение предложения азота и фосфора, но не реагировала на калий в пределах тестируемого диапазона. Основываясь на модели поверхностного отклика, самый высокий средний выход 144 г/растение был достигнут при концентрациях N = 194 мг/л и P = 59 мг/л. Визуальный анализ контурных графиков показывает, что урожайность соцветий лучше всего реагировала на азот в диапазоне 160-230 мг/л, а фосфор в диапазоне 40-80 мг/л.

 

Содержание каннабиноидов

Связи воздействия обработки питательными веществами на содержание каннабиноидов в соцветиях не наблюдалось.

 

Связь урожайности соцветий с признаками вегетативного роста

Никаких симптомов дефицита или избытка питательных веществ ни на одном из растений не наблюдалось. Урожайность соцветий линейно и положительно коррелировала с измеренными признаками вегетативного роста. Урожайность соцветий имела значительную корреляцию со свежей массой надземных растений, индексом роста растений и сухой массой корней.

 

Обсуждение

Целью этого исследования было определение оптимальной концентрации N, P и K в питательном растворе для стадии цветения беспочвенного выращивания каннабиса. Оптимальные концентрации азота и фосфора в питательных растворах составили приблизительно 194 мг/л и 59 мг/л соответственно. На основе анализа модели поверхности отклика было обнаружено, что азот и фосфор были наиболее важными факторами в прогнозировании урожайности соцветий. Урожайность соцветий заметно снизилась за пределами диапазона 160-240 мг/л азота и 40-80 мг/л фосфора. Эти данные свидетельствуют о том, что лекарственный каннабис хорошо реагирует на азот и фосфор на стадии цветения. Урожайность соцветий не зависела от концентрации калия в питательном растворе в пределах испытанного диапазона, что указывает на то, что калий, поставляемый в настоящее время (300-400 мг/л) некоторыми коммерческими культиваторами, вероятно, слишком высок.

 

Урожайность соцветий имела сильную положительную корреляцию с рядом признаков вегетативного роста. Сильная корреляция между урожайностью соцветий и индексом роста растений указывает на то, что более крупный размер растения может привести к более высокому урожаю соцветий. Подача питательных веществ, особенно азота, может определять размер растения каннабиса, поскольку азот является важным компонентом растительного хлорофилла и рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы-оксигеназы (Рубиско). Низкий уровень азота может снизить фотосинтетическую способность растений и ограничить их рост. Для цветущего лекарственного каннабиса в беспочвенной культуре подача 30-80 мг/л азота ограничивала рост всего растения и соцветий, но растения работали оптимально при подаче 160-320 мг/л азота.

 

Наряду с индексом ростом над землёй рост корней также влияет на общий размер растения. Мы обнаружили, что урожай соцветий имеет сильную положительную корреляцию с сухой массой корней, что подтверждает наш вывод о том, что более крупные растения дают более высокие урожаи. Дальнейшие исследования реакции каннабиса на азот должны учитывать качество продукта и распределение биомассы по различным органам растения, чтобы максимизировать рост и качество соцветий.

 

В то время как моделирование реакции урожайности соцветий каннабиса на N, P и K с помощью анализа поверхности учитывает взаимодействие между питательными веществами, наша модель отклика поверхности показала, что калий в пределах испытанного диапазона 60-340 мг/л не влиял на урожайность соцветий. Это отсутствие реакции может свидетельствовать о том, что 60 мг/л калия слишком мало, чтобы вызвать дефицит питательных веществ, а 340 мг/л недостаточно, чтобы вызвать токсичность.

 

Во многих коммерческих фирмах, выращивающих каннабис, в настоящее время используются составы удобрений, которые содержат очень высокие уровни фосфора (в некоторых случаях более 200 мг/л). Эта практика основана на неофициальных данных о том, что фосфор увеличивает образование соцветий. Эти концентрации намного выше, чем оптимальная норма 60 мг/л, обнаруженная в нашем исследовании, и в более высоком диапазоне может вызвать снижение как роста растений, так и урожайности соцветий.

 

Помимо снижения роста и урожайности растений, избыточное поступление питательных веществ является потенциальным источником загрязнения окружающей среды. Тем не менее, каннабис, похоже, обладает способностью накапливать и мобилизовать определенное количество фосфора, когда это необходимо. При содержании фосфора более 30 мг/л на вегетативной стадии каннабис поглощает избыток фосфора в тканях корней, чтобы предотвратить его избыточное накопление в побегах. Более глубокое понимание требований каннабиса к фосфору и истинности практики поставки высоких концентраций фосфора должно стать приоритетом для повышения устойчивости производства каннабиса.

 

В то время как концентрации каннабиноидов в тканях цветов в нашем исследовании не реагировали на концентрации NPK в питательном растворе, другие исследования показывают, что минеральное питание растений может влиять на выработку вторичных метаболитов в каннабисе.

 

По-видимому, существует обратная зависимость между урожайностью каннабиса и его эффективностью, при этом концентрации каннабиноидов снижаются по мере увеличения урожайности соцветий растений.

 

Соцветия растений, получавших 160 мг/л азота, имели примерно на 30-20% более низкие концентрации ТГК-К и КБД-К, чем растения, получавшие только 30 мг/л. Но в то время как стресс и дефицит питательных веществ могут повысить содержание каннабиноидов в соцветиях, этот метод не идеален для оптимизации общей продуктивности растений, поскольку растения, получающие 160 мг/л азота, дают вдвое больше урожая, чем растения, получающие 30 мг/л азота.

 

Понимание того, как снабжение питательными веществами влияет на концентрацию каннабиноидов, стало бы важным шагом на пути контроля и стандартизации содержания каннабиноидов в медицинской конопле. Концентрации каннабиноидов также важны для рекреационных потребителей, которые относят концентрации ТГК и КБД к числу наиболее важных факторов при принятии решений о покупке. Учитывая, что каннабиноиды являются соединениями, которые делают каннабис столь уникально ценным, необходимо проделать дополнительную работу для изучения влияния минерального питания на урожайность каннабиса и взаимосвязи между урожайностью и эффективностью.

 

Оригинальное исследование: preprints.org Автор: @Nimand

 

Еще почитать:

Исследование: Как увеличение интенсивности света влияет на урожайность, синтез терпенов и морфологию каннабиса Каннабиноиды и терпены: способы увеличения вторичных метаболитов каннабиса Видео: Освещение для каннабиса: FAQ и мифы. Лекция на русском

Таблица усвоения питательных веществ растением при разном pH

 

Данный график — как букварь для гровера. После его изучения приходит понимание важности измерения рН воды и почвы: если кислотность субстрата будет нарушена, то растению станет сложнее получать питательные вещества.

 

Поэтому приобретаются первые лакмусовые полоски, и в порыве эйфории проверяются все жидкости в доме вплоть до пива и бабушкиного травяного чая. А потом приходит понимание, что можно углубиться в ещё более детальное измерение уровня кислотности, вследствие чего арсенал гровера пополняется полноценными водными и почвенными рН-метрами. 

 

Именно о почвенном рН-метре и о том, как правильно измерять уровень кислотности почвы, пойдёт речь в сегодняшней статье.

 

Измерение уровня кислотности почвы

 

Вариант 1. Вытяжка из грунта

 

Заранее подготовить чистую ёмкость с крышкой и дистиллированную воду.

 

Из горшка с грунтом вынимается небольшое количество земли. Желательно брать не с поверхности, а с глубины.

 

Вынутую землю пометить в емкость и залить дистиллированной водой в соотношении 1 к 5. Желательно дистиллированную воду заранее прокипятить и остудить, чтобы избавиться от лишнего углекислого газа, который может повлиять на результат замера.

 

Ёмкость закрыть крышкой. Встряхивать в течение 3-х минут. После оставить раствор на 10 минут.

 

Убрать крышку с ёмкости. Отфильтровать раствор через бумажный фильтр (подойдут фильтры для кофеварки).

 

В отфильтрованную жидкость погрузить лакмусовую полоску на 1-2 секунды. Достать. Сравнить результат со шкалой. Или использовать водный рН метр, который также погрузить в раствор и дождаться показателя.

 

 

Вариант 2. Специальный инструментарий

 

Обильно увлажнить грунт в горшке. Воткнуть почвенный рН-метр. Уплотнить влажный грунт вокруг электродов. Засечь 2 минуты и дождаться результата.

 

 

В чём смысл приобретения рН-метра для почвы

 

Отличие рН-метра для воды от рН-метра для почвы в функциональности. На рынке представлены почвенные рН-метры, которые измеряют дополнительные показатели, такие как:

Влажность почвы — поможет в принятии решения о необходимом объёме воды для полива растения Содержание азота, калия и фосфора в почве — позволит измерить плодородие почвы и отследить степень усвоения элементов растением Уровень освещенности — позволяет отследить окончание срока эксплуатации ламп, чтобы вовремя произвести их замену

 

Отличается и процедура измерения уровня кислотности. При наличии только водного рН метра перед измерением кислотности грунта необходимо совершить ряд манипуляций (извлечь грунт из горшка, поместить в емкость, развести дистиллированной водой и т.д.). А при наличии почвенного рН-метра измерение проводиться при помощи простого действия — втыкания измерительного прибора в грунт.

 

Почвенные рН-метры

 

ETP-300

 

“Садовый” автономный измеритель кислотности грунта ETP-300 предназначен только для измерения окислительно-восстановительных свойств почвы.

 

 

 

Диапазон измерения: от 3 до 10 рН Индикатор: стрелка Время получения результата: 40-60 секунд Погрешность: +/- 0,5 рН

 

ETP-303 (3 в 1)

 

А вот этот инструмент позволит вам измерять сразу три параметра — влажность и кислотность грунта, а также освещённость.

 

 

Диапазон измерения: от 3.5 до 8 рН Шкала влажности: от 0 до 100% Интенсивность света: от 0 до 2000 люкс Индикатор: стрелка Время получения результата: 5 минут Погрешность: +/- 0,5 рН

 

ETP-307

 

Измеритель кислотности и плодородия грунта ETP-307. Для определения плодородия прибор анализирует общее содержание азота, фосфора и калия на измеряемом участке почвы.

 

 

Диапазон измерения: от 1 до 9 рН Шкала плодородия: низкий уровень, идеально, высокий уровень Индикатор: стрелка Время получения результата: 2 минут Погрешность: +/- 0,5 рН

 

AMTAST AMT-300

 

Профессиональный анализатор почвы 4 в 1. Измеряет кислотность, влажность и температуру почвы, а также освещённость.

 

Диапазон измерения: от 3.5 до 9 рН Шкала влажности: от 0 до 100% Интенсивность света: от 0 до 2000 люкс Диапазон измерения температуры: от -9 до +50 Индикатор: LCD дисплей Время получения результата: 5 минут Погрешность: +/- 0,5 рН

 

На выбор почвенного рН-метра влияет повторяемость измерений, скорость измерений, способность измерять кислотность в рыхлом грунте.

 

Источник: Эконикс-Эксперт

Подготовила: @PollyMolly

 

Еще почитать:

FAQ по корректировке pH и ответы на вопросы новичков Обзор Dzagi: гид по pH-тестам Как отрегулировать pH и устранить недостаток питательных веществ Первый индорный гров на земле. С чего начать? Как приготовить органическую супер почву и выращивать на ней